Title: A membr
1Anyagtranszport és mechanizmusai
Dr. Horváth Ferenc SZTE, Növénybiológiai Tanszék
2A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Az anyagtranszportot négyféle hajtóero
mozgatja koncentráció, hidrosztatikus nyomás,
(gravitáció) és elektromos mezo
µj - j anyag (elektro)kémiai potenciálja µj0 j
anyag standard kémiai potenciálja R egyetemes
gázállandó (8,314 J mol-1 K-1) T abszolút
homérséklet (K) a aktivitás, töltés nélküli
oldatoknál Cj moláris koncentráció Vj j anyag
parciális moláris térfogata P hidrosztatikai
nyomás z az anyag töltése F- Faraday
állandó (96500 coulomb / mol proton) E
elektromos potenciál A kémiai potenciál
mértékegysége a J mol-1.
3A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Passzív transzport A sejt nem fektet be
metabolikus energiát az anyag felvételére. 1. A
transzport hajtóereje két pont között fennálló
kémiai potenciál különbség ?DIFFÚZIÓS MOZGÁS
Passzív transzporttal mozog a víz gázok
oxigén, széndioxid, N oxidok, kéndioxid
stb. lipidoldékony, apoláros anyagok (benzin,
szénhidrogének, aromás szennyezodések), ionok
(bizonyos esetekben)
4A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Elektromosan töltetlen anyagok kémiai potenciálja
S anyag kémiai potenciálja
Két vizes teret határoló membrán esetén
A kémiai potenciál különbsége
Ez a koncentráció-különbségben raktározott
energia.
Mindig a citoplazmához viszonyítunk.
5A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
A transzport iránya
DmS elojele fontos, ha pozitív a citoplazmába
az S anyag energiaigényes, aktív módon
jut negatív a citoplazmába az S anyag passzív
módon jut 0 nincs koncentráció-különbség
6A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Vegyünk egy z töltéssel rendelkezo iont
(I) Elektrokémiai potenciál
membránpotenciál
7A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Aktív transzport A sejt metabolikus energiát
fektet be az anyag felvételéhez. Elsodleges
aktív transzport ionpumpák Növényekben a
proton-transzlokáló ATP-ázok (H-ATP-áz) -
lokalizáció plazmamembrán, vakuólum membrán
(tonoplaszt) - az ATP hidrolízisével
felszabaduló energiát a proton sejtfalba ill.
vakuólumba irányuló transzportjára
használja Eredmény proton elektrokémiai
potenciál gradiens ? proton mozgató ero
(pmf) Másodlagos aktív transzport A pmf
felhasználása más anyagok transzportjában -
ezek a transzporterek lehetnek hordozók és
csatornák
8A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Proton mozgató ero (pmf) a protonra vonatkozó
transzmembrán elektrokémiai potenciálkülönbség,
voltokban kifejezve
z 1
A pmf-et voltokban fejezzük ki és nem J/mol
egységekben, így
Tehát 1 pH egység különbség 59 mV elektrokémiai
potenciálváltozást jelent a protonmozgató eroben!
9A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
pH 7,5
Vm -150 mV DpH -2
pmf -268 mV
pH 5,5
A protonpumpák muködése elektrogén így nem csak
a pH különbség eloállításán keresztül növelik a
pmf abszolút értékét, hanem a Vm értékét is
negatívabbá teszik.
A proton elektrokémiai potenciál-grádiensében
rejlo energia a másodlagos aktív transzportban
hasznosul
10A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Kemiozmotikus hipotézis
Peter Mitchell 1960-as évek (Nobel díj, 1978). A
sejt energiatermelése és a H elektrokémiai
potenciál-gradiense közötti összefüggés. ATP lt-gt
ADPPipmf
11A membrántranszport alapjai 2. A
membrántranszport szervezodése
Az ionpumpák átviteli száma kicsi, és pmf-et
generál a hordozók számára is, ezért jóval
nagyobb a koncentrációja a membránban, mint a
csatornáké.
Ionpumpák Hordozók Ioncsatornák
Átviteli szám (db molkekula/másodperc) 102 103 106 108
Membránon vett suruség(db/mm2) 100-1000 10-100 1-10
12Pumpák
A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
- F-típusú H-ATPázok
- belso mitokondriális és tilakoid membrán
- P-típusú H-ATPázok
- gomba PM H-ATPáz
- növény PM H-ATPáz
- Na / K ATPáz (állati sejtek)
- Ca2-ATPázok (növény és állat PM és
endomembránok) - H / K cserélo ATPáz (emlos gyomor mucosa
réteg) - V-típusú H-ATPázok
- Vakuoláris proton pirofoszfatáz (H-PPáz)
- ABC-típusú pumpák
13A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
F-típusú H-ATPázok
- a belso mitokondrális membránon és a tilakoid
membránon találhatók - a redoxpotenciál ill. a fény energiájából pmf
keletkezik - a pmf hajtja a H áramlást az F-típusú ATPázon
keresztül ? ATP szintetizálódik
F1 (mitokondrium) CF1 (kloroplasztisz)
alegység a3b3gde 3 db b alegység 3
nukleotidköto domén
F0 (mitokondrium) CF0 (kloroplasztisz)
alegység ab2c9-12 A c alegységek forognak a
proton transzlokáció során, ami a g alegységet
pörgeti, így a b nukleotidköto helyek
konformációváltozást szenvednek..
14A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
John Walker és Paul Boyer (Nobel díj, 1997)
Kötésváltoztató mechanizmus Gyenge kötodés az
aktív centrum gyengén köti az ADP-t és Pi-t Eros
kötodés az ATP molekula kialakul Nyitott
konformáció ATP leválás 3 db H átjutása alatt
szintetizálódik 1 ATP molekula.
15A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
P-típusú ATPázok családja
1 db 100 kDa-os protein, ATP-t köt és H
transzportot katalizál
Funkciói - pmf (Vm) generálása (hordozók és
ioncsatornák) - sejtfal
savanyítás (auxin hozzáadása után 2 perccel!) ?
expanzin enzimek aktiválódnak, amelyek a
H-kötéseket lazítják sejtfal növekedés
- H eltávolítása a sejtbol (anyagcsere
folytonosan termeli) - a citoszol
pH-jának szabályozása (7,3-7,5) a H-ATPáz
pH-optimuma 6,6, tehát ha savas a közeg, akkor
jobban muködik
Hatékonysága 1 proton / 1 MgATP
hidrolízise Reakcióciklus E1 konformáció
H kötodik hozzá Az ATP hidrolízise, és a
foszfát-csoport enzimhez való kapcsolódása az E2
konformáció kialakulását eredményezi. E2 alacsony
affinitású a H-ra nézve, így az a túloldalon
leválik. Az enzim-foszfát kötés hidrolízise során
Pi disszociálódik, és az enzim E1 konformációba
tér vissza.
16A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A foszfátcsoport kovalens kötodése (E-P)
megkülönbözteti az F-típusú ATPázoktól. Az
enzimcsalád tagjai gomba PM H-ATPáz növény PM
H-ATPáz Na / K ATPáz (állati sejtek) (Skou,
Nobel díj, 1997) Ca2-ATPázok (növény és állat
PM és endomembránok) H / K cserélo ATPáz
(emlos gyomor mucosa réteg) Közös
tulajdonságok ortovanadáttal (H2VO4-) való
gátolhatóság domén struktúra azonossága (foleg
az ATP-köto domén konzervált a különbözo pumpák
között)
ATP-kötodomén
D aszparaginsav (foszforilálódik)
A defoszforilációban résztvevo hurok
Autoinhibíciós domén
17A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A P-típusú ATPázokat egy multigén-család
kódolja, mely szövetspecifikus expressziót mutat
Arabidopsis (lúdfu) esetén AHA géncsalád (10 tag,
10 izoformát kódol) pl. AHA3 floém AHA10
fejlodo magvak Magyarázat más és más az ATP-re
vonatkozó KM érték, más az ortovanadátra való
érzékenység
- Szövetspecifikus P-típusú ATPázgénexpresszió
Arabidopsisban. - szárkeresztmetszet, az AHA3-c-Myc fúziós protein
immunofluoreszcens kimutatása P floém, C
kortikális sejtek, X xilém - AHA10 gén promóterének expressziója fejlodo
magvakban, b-glükuronidáz (GUS) festéssel. - A nyilak két magot mutatnak a
becotermésben. A kék szín az AHA10-GUS fúziós
protein termelodését mutatja. -
-
18A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A P-típusú ATPázok szabályozása - pH-tól való
függés - a C-terminális autoinhibíciós domén
(ennek eltávolítása vagy pontmutáció benne
módosítja az enzim muködését) - az
auxinnak hatása a pumpa expressziójának
növelésében van A fuzikokcin (Fusicoccum
amygdali gomba toxinja) növeli a zárósejtek
turgorát ? sztómanyitódás, levélszáradás 1994
a fuzikokcin receptora a szignál-transzdukciós
proteinek családjából való 14-3-3
protein 14-3-3 proteinek dimerek, melyek a
célproteinre (foszforilált szerin reziduálist
tartalmaz) vonatkozó konszenzus szekvenciával
rendelkeznek
19A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A C terminus autoinhibíciós doménként
viselkedik. A szerin foszforilációja és a kötodo
2 db 14-3-3 protein megszünteti a gátlást és
aktiválja az enzimet (balra) Az enzimet
foszforiláció híján a fuzikokcin 14-3-3
proteinek is aktiválhatják
20A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
Na / K ATPáz (állati sejtek)
21A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A Ca2-ATPáz
Megtalálható PM, ER, kloroplasztisz membrán,
vakuoláris membránok Ca2-ot pumpálnak ki a
citoszolból, Ca2cyt 0,2 mM Állati sejtekben
részletesen tanulmányozott pumpák
PM-típusú ER-típusú
Aktiváció a kalmodulin a C-terminálishoz kötodik nincs kalmodulin kötohely
Helye növényekben PM, tonoplaszt (itt kivételesen a kalmodulin kötohely az N-terminálison van), kloroplasztisz belso membrán ER
A Ca2 átjuttatásához sok energia kell, mert -
kint több Ca2 van mint a citoszolban - a
citoszol elektromosan negatívabb, mint a külso
oldal A Ca2 eletrokémiai potenciálkülönbségébol
származó szabadenergia -60 kJ/mol Az ATP
hidrolízisébol származó szabadenergia -50
kJ/mol, ami nem elég a pumpa muködtetéséhez. Gyak
ran Ca2 / H cseréloként muködik!
Vakuoláris PM-típusú Ca2-ATPáz
22A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
A vakuoláris (V-típusú) H-ATPázok csoportja
Funkciója a vakuoláris tér savanyítása kb. pH
5,5-ös értékre (citrusfélék gyümölcsének esetén
ez akár pH 3 alatt is lehet) nemcsak a hordozók
számára energizálja a membránt, de sok
vakuoláris enzim (proteázok, glükozidázok,
foszfatázok, nukleotidázok) pH optimuma savas
Az F-típusú ATPázok rokonai, de fordított
irányban muködnek. Sokkal összetettebb alegység
szerkezet, mint az F-típusnál. Sztöchiometria 2
db H transzlokáció / 1 ATP hidrolízis Gátolhatós
ág bafilomicin A1, a V0 szektorral lép
kölcsönhatásba Elofordulása tonoplaszt, ER,
Golgi, burkolt vezikulumok membránja (a
mitokondriumon és a kloroplasztiszon kívül minden
organellum képes fenntartani a savas belso terét.
V1
V0
23A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
Vakuoláris proton pirofoszfatáz (H-PPáz)
A szervetlen pirofoszfát (PPi) hidrolízisébol
felszabaduló energiát hasznosítja Szerkezete
egyszeru, kicsi (80 kDa)-os fehérje, 16
transzmembrán szegmenssel Szubsztrátja a
dimagnézium-pirifoszfát (citoplazmában mM-os
nagyságrendben) Gátolhatósága Ca2,
aminometilén-difoszfonát, a muködéséhez a
citoplazmatikus felszínnél K ionoknak kell jelen
lenni Miért van szükség kétféle protonpumpára
a tonoplaszton? Fiatal sejtekben sok PPi
termelodik ? a hidrolízise során felszabaduló ho
helyett az energia inkább a pmf létrehozásában
hasznosul
24A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
ABC-típusú pumpák
Az amfipatikus molekulák vakuoláris membránon
való átjutását katalizálják pl. flavonoidok,
antocianinok, a klorofill lebontási
melléktermékei, xenobiotikumok (herbicidek). Az
átjutáshoz ATP szükséges, a transzport viszont
nem csökkenti a pmf-t. ABC ATP binding casette
elterjedt az enzimek között, melyek ATP-t
kötnek. Walker A és B motívum
NBF nucleotide-binding fold (2 db van
belole) Sok transzmembrán szegmens
25A membrántranszport alapjai 3. Pumpák
ABC-típusú pumpák
A flavonoidok és xenobiotikumok
glutation-konjugátumként (GS-konjugátumok)
transzlokálódnak. GStripeptid (glutaminsavciszte
inglicin) Glutation S-transzferáz (GST) enzim
végzi a konjugátum-képzést. Az
ABC-transzporterhez való kötodés után 1,
pumpaszeru muködés, vagy 2, flippázszeru
muködés. Nem tisztázott.
glutation (GS)
AtMRP2 Arabidopsis ABC-transzporter
DNP dinitrofenol (xenobiotikum)
NCC lineáris tetrapirrol Bn Brassica napus
26Hordozók
A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
pmf
H
anyag
szimport v. antiport
uniport
- uniport elektrokémiai gradiensen lefelé
(facilitált diffúzió) - kotranszport elektrokémiai gradiensen fölfelé
- szimport
- antiport
- Másodlagos aktív transzport az elsodleges aktív
transzportban generált pmf használódik fel az
anyag energiaigényes transzportjára
Energiát szolgáltatja pmf (H), Na és több
töltés nélküli anyag is
27A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
A hordozók muködése Michaelis-Menten kinetikát
mutat, mely konformációs változásra utal
- a transzport alatt nem történik kémiai
módosulás, - a transzport kinetikája
szubsztráttal való telítodést mutat - a
Michaelis-Menten kinetikával kezelheto
A maximális sebesség felénél mérheto szubsztrát
koncentráció a Michaelis-Menten állandó (KM)
szubsztrát
Lineáris szakasz Alacsony S koncentráción az S
hordozóhoz való kötodése alakítja a kinetikát
Magasabb S koncentráción a konformációs változás,
a kötohelyhez való hozzáférhetoség a limitáló
tényezo
28A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
A másodlagos aktív transzport molekuláris
mechanizmusa (itt szimport esetén)
29A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
Másodlagos aktív transzport szimport és antiport
A kotranszportált anyag lehet semleges és
töltéssel rendelkezo is
30A membrántranszport alapjai 4. Hordozók - A
kálium felvétele
nagy affinitású rendszer K-H szimport
(11) HKT1 (534 aminosav protein) µM Kext
tartományban gyökér kortex sejtekben alacsony
affinitású rendszer befelé egyenirányító
ioncsatornák 1 mM Kext fölött Vm-hajtotta K
influx (H-ATPáz!) Al3 ionok gátolják
31A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
Más, nem ionhoz kapcsolt kotranszport
pl. vakuoláris glükóz és aminosav
hordozók Kloroplasztisz 2-oxoglutársav-almasav,
ATP-ADP, hexóz-foszfát-ortofoszfát, DHAP-ortofos
zfát Ekkor a transzportált anyag
koncentráció-gradiense szolgáltatja az energiát.
32A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
- A hordozók szerkezete
- méretük 40-50 kDa, többnyire hidrofób fehérjék
- általában 12 transzmembrán domén, a 6-7 között
erosen hidrofób loop - több belso repeat szekvencia a C és
N-terminálisfélben (az idok során génduplikáció
történt) - MFS (main facilitator superfamily)-ba tartoznak,
mely nagy és erosen diverz csoport
33A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
pmf
H
Sz
Reakció
e
c
n sztöchiometriai arány z átvitt anyag töltése
szimporter
A reakció akkor játszódik le balról jobbra (akkor
juttat a szimporter befelé protont és S anyagot),
ha a két elektrokémiai potenciálgradiens vektori
összege befelé mutat, azaz
(a citoplazmához viszonyítunk)
Kifejtve a két kémiai potenciált
34A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
Ha pl. pHcyt 7,5 pHextracell 5,5 akkor az
anyag maximális felhalmozódási aránya
Ha pl. S töltés nélküli anyag, és 1 protonnal
transzportálódik, akkor n 1 esetén Vm -150 mV
mellett a max. felhalmozódási arány 36500. n 2
esetén ez 1,34 x 109 ! Tehát a protonhoz
kapcsolt hordozók nagy koncentrációkülönbséget
képesek létrehozni, szabályozásuk nagyon fontos.
35A membrántranszport alapjai 4. Hordozók
Néhány esetben a hordozók muködése nem H-hoz
hanem Na-hoz kötött.
Tengerben élo algafajok esetén az NO3- és néhány
aminosav felvétele Na-hoz kötött szimportot
mutat. Tengervíz 480 mM Na! Édesvízi algáknál a
Na/K szimport is lehetséges, a Na-ra vonatkozó
nagy Vm komponens miatt.
36A membrántranszport alapjai 5. Az ioncsatornák
általános tulajdonságai
Ioncsatorna
Minden sejt minden membránján megtalálható.
Két konformációs állapot nyitott és zárt. Az
állapotok közti átmenetet a membránpotenciál és a
ligandum kötodése szabályozza (kapuzási faktorok).
Teljes sejt méréseknél az teljes ionáramot fel
lehet írni I N i Po , ahol N a
csatornák száma i 1 db nyitott csatornán
átfolyó áram Po annak a valószínusége, hogy a
csatorna nyitott állapotban van.
37A membrántranszport alapjai 5. Az ioncsatornák
általános tulajdonságai
Az ioncsatornán való átjutás passzív csak
-tól függ. Az egycsatorna-áram
membránpotenciáltól való függése lineáris
Érvényes rá Ohm-törvénye I V / R Meredeksége
1 / R g (konduktancia) pS g értéke függ a
permeáló ion koncentrációjától, tehát a csatorna
konduktanciáját adott ionkoncentráció-viszony
mellett adják meg.
Az áram iránya negatív áram kation influx
vagy anion efflux pozitív áram kation efflux
vagy anion influx
38A membrántranszport alapjai 5. Az ioncsatornák
általános tulajdonságai
Equilibrium esetén nincs nettó ionáramlás
Eeq,ion az ion egyensúlyi potenciálja, csak az
ion koncentráció-különbségétol függ. Ha csak
egyféle ion van a rendszerben, ezt
Nernst-potenciálnak nevezzük.
Az egyensúly itt azt jelenti, hogy az iont adott
irányba mozgató koncentráció-gradiens nagysága
megegyezik az ellenkezo irányban ható elektromos
potenciál-gradiens nagyságával.
Ha többféle permeáló ion (legfontosabb a Na, K,
Cl-) van a membrán két oldalán, akkor a
Goldman-Hodgkin-Katz egyenlet leírja a nyugalmi
membránpotenciált
P permeabilitás
39A Nernst-egyenletbol számított érték
megfigyelt érték
- A K ionok a citoszolba és a vakuólumba passzív
módon jutnak, kivéve, ha az extracelluláris K
koncentráció alacsony (aktív módon hordozóval) - A Na aktív módon pumpálódik a citoszolból
kifelé az extracelluláris térbe és a vakuólumba - A köztes anyagcsere protonjai aktív módon
pumpálódnak ki a citoszolból (megorzodik a
citoszol semleges pH-ja, míg az extracelluláris
tér és a vakuólum 1-2 pH egységgel savanyodik) - Minden anion aktív módon jut a citoszolba
- A Ca2 aktív módon transzportálódik ki a
citoszolból
40(No Transcript)
41A membrántranszport alapjai 5. Az ioncsatornák
általános tulajdonságai
Kapuzási faktor Csatorna Membrán Kapuzási kölcsönhatás Csatorna funkció
Fizikai
Feszültség Ca2, K, Cl-, M, X-, N? PM, T, C, M de-/aktiváció idofüggo inaktiváció Feszültség stabilitás, ingerelhetoség, ozmotikus anyagmozgás
Mechanikai stressz Ca2, K, Cl-, M, X- PM, T Aktiváció Turgor/ozmoreguláció
Kémiai (ligandum)
Ca2 K, Cl- PM In-/aktiváció ingerelhetoség, ozmotikus anyagmozgás
Ca2 Ca2, K, Cl-, M, X-, N? T In-/aktiváció ozmotikus anyagmozgás, szignál-transzdukció
K K PM Feszültségfüggo aktiváció Elektrokémiai potenciál integráció, ozmotikus anyagmozgás
Cl- K T Aktiváció ozmotikus anyagmozgás
H K, Cl- PM Feszültségfüggo aktiváció Elektrokémiai potenciál integráció
H H PM Inaktiváció ?
IP3 Ca2 T Aktiváció Ca2 felszabadítás, szignál-transzdukció
Nukleotidok K, X- PM, T, M In-/aktiváció Elektrokémiai potenciál integráció
Auxin X- PM Feszültségfüggo aktiváció ingerelhetoség, ozmotikus anyagmozgás
Kalmodulin Ca2, M, X-, N? PM, T Inaktiváció ingerelhetoség, turgor- és ozmoreguláció, szignál-transzdukció
foszforiláció, és diszulfid hidak kialakítása
42A membrántranszport alapjai 5. Ioncsatornák
Patch clamp mérési elrendezések
43A membrántranszport alapjai 5. Ioncsatornák
Patch clamp labor
44A membrántranszport alapjai 5. Ioncsatornák
Patch clamp labor
45Sztómamuködés, a zárósejt
A membrántranszport alapjai Sztómamozgás
Muködésének célja a növény CO2 igényét a
vízveszteség minimalizálása mellett elégítse
ki Víz és gázcsere, levélhomérséklet,
ionfelvétel és transzport Hidroaktív nyitódás és
záródás (fény, homérséklet, CO2, páratartalom,
növényi hormonok)
46A membrántranszport alapjai Sztómamozgás
A sztómanyílás méretének, a zárósejt K és
szacharóz-tartalmának alakulása a nap folyamán
47Befelé és kifelé mutató kálium áramok
zárósejtekben
A membrántranszport alapjai Sztómamozgás
(KAT1)
Áram
t
0
Feszültség
60 mV
-140 mV
48Sztómanyitódás
Sztómazáródás
Kék fény
R
Ca2
Cl-
S
Cl-
H
depolarizáció
K 100 mM ? 800 mM
Cl-
K
K
1. H-pumpa aktiváció 2. membrán hiperpolarizáció
3. K, Cl- és Ca2 influx
1. H-pumpa inaktiváció 2. S és R-típusú
anion-csatorna aktiváció 3. hosszan tartó PM
depolarizáció 4. K efflux
K
49A membrántranszport alapjai Anyagtranszport a
gyökérben
Anyagtranszport a gyökérben
50Apoplaszt és szimplaszt
A membrántranszport alapjai Anyagtranszport a
gyökérben
51A membrántranszport alapjai Anyagtranszport a
gyökérben
A plazmodezmák olyan 40 nm-es átméroju
citoplazma-hidak, melyek a víz és kisebb oldott
anyagok diffúzióját teszik lehetové a sejtek
között. Suruségük a membránban 15 db/µm2.
52A membrántranszport alapjai Anyagtranszport a
gyökérben
Passzív diffúziós modell
53A membrántranszport alapjai Anyagtranszport a
gyökérben
- A xilém feltöltés passzív folyamat, vagy
irányított transzport-mechanizmus? - Válasz xilém parenchima PM ?
- szabályozott transzport K-specifikus és
nem-szelektív kation efflux csatornák, melyek Vm
és Ca2-függoek - a szabályozás független az epidermisz és
kortikális sejtek aktív anyagfelvételétol
Izotóppal jelölt transzport