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Antecedentes y experimento Conocer el fundamento de la inducci n de la s ntesis de prote nas recombinantes en E. coli. Realizar la inducci n de una prote na ... – PowerPoint PPT presentation

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Title: Inducci


1
Inducción de proteína recombinante
  • Antecedentes y experimento

2
Objetivos
  • Conocer el fundamento de la inducción de la
    síntesis de proteínas recombinantes en E. coli.
  • Realizar la inducción de una proteína
    recombinante (?-lactamasa).
  • Obtener la curva temporal de inducción de una
    proteína recombinante.
  • Interpretar el patrón electroforético de
    producción de una proteína recombinante.
  • Conocer las aplicaciones biotecnológicas de las
    proteínas recombinantes.

3
Tecnología del DNA recombinante, clonación génica
o ingeniería genética
Estudio de una secuencia específica de DNA que
suele encontrarse en un conjunto heterogéneo de
secuencias. Aislamiento, amplificación,
secuenciación y expresión de un fragmento de DNA
específico
4
Propiedad básica del DNA que permite su
manipulación
El acoplamiento de cadenas por
complementariedad. La extraordinaria
especificidad del reconocimiento entre secuencias
de bases complementarias constituye un poderoso
instrumento para la identificación, aislamiento,
clonación de fragmentos de DNA complementarios a
uno dado
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Tecnología de DNA recombinante Aislamiento de un
gen de un organismo para introducirlo en otro
6
Características de las proteínas que se pueden
producir en un organismo transgénico
  • Compartimento en el que la proteína se expresará
    necesita una secuencia señal?
  • Si es un proteína membranal hay que considerar
    que la proteína completa no se pueda expresar
  • Si la proteína tiene puentes disulfuro, el
    huésped debe ser capaz de formar los puentes
    disulfuro
  • Modificaciones pos-transduccionales. El huésped
    debe ser capaz de hacer las modificaciones
    post-traduccionales
  • Complejo proteico, hay que considerar la
    estrategia de co-expresión
  • La posible toxicidad de la proteína, utilizar un
    huésped resistente o un sistema libre de células

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Proteínas recombinantes-fusionadas a otra proteína
8
Otras señales que se pueden introducir a una
proteína
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Clonación del DNA
  • DNA foráneo (secuencia que se desea clonar)
  • Vector de clonación (vehículo)
  • Organismo huésped
  • (E. coli)
  • Selección de vectores

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Vector de recombinación pET-TEM-1
  • Un vector de recombinación es la molécula que
    resulta de la unión de un DNA vector con el DNA
    de interés (inserto en nuestro caso la
    ?-lactamasa).
  • Un DNA vector es un vector de clonación que
    permite introducir en una célula hospedera un
    fragmento de DNA que se pretende clonar en esta
    célula hospedera el vector se replica y expresa,
    en su caso.

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Vector de clonación pET-24a()
12
(No Transcript)
13
La resistencia adquirida a los aminoglucósidos se
debe a 3 mecanismos básicos
  • Presencia de enzimas que modifican
    aminoglucósidos Es el mecanismo más común y ha
    sido detectado en diferentes bacilos
    gramnegativos, Staphylococcus aureus y
    Enterococcus spp.Se trata de diversas enzimas
    (acetilasas, adenilasas y fosfatasas) que
    modifican grupos sustituyentes de la molécula, lo
    que resulta en un compuesto de baja afinidad por
    el ribosoma bacteriano. Además no ocurre la
    segunda fase de ingreso acelerado de la droga a
    la célula.
  • Alteraciones en los sitios de unión. Se debe a
    mutaciones en los genes que codifican los sitios
    de unión a estas drogas. Es un mecanismo poco
    frecuente y ha sido hallado en E. coli y N.
    gonorrhoeae.
  • Disminución del ingreso Determinado por
    alteraciones a nivel de la membrana externa para
    el caso de Pseudomonas aeruginosa, que dificultan
    la entrada de la droga a la bacteria.

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Gene que da resistencia a kanamicina
  • Aminoglycoside 3'-phosphotransferase (APH). The
    APH subfamily is part of a larger superfamily
    that includes the catalytic domains of other
    kinases, such as the typical serine/threonine/tyro
    sine protein kinases (PKs), RIO kinases,
    actin-fragmin kinase

atgagccatattcaacgggaaacgtcttgctctaggccgcgattaaattc
caacatggatgctgatttatatgggtataaatgggctcgcgataatgtc
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ctttttcaaaaatatggtattgataatcctgatatgaataaattgcagt
ttcatttgatgctcgatgagtttttct
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Vector de recombinación pET- TEM-1
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f1 Ori o F1phage origin.
  • gcattaagcgcggcgggtgtggtggttacgcgcagcgtgaccgctacact
    tgccagcgccctagcgcccgctcctttcgctttcttcccttcctttctc
    gccacgttcgccggctttccccgtcaagctctaaatcgggggctccctt
    tagggttccgatttagtgctttacggcacctcgaccccaaaaaacttga
    ttagggtgatggttcacgtagtgggccatcgccctgatagacggttttt
    cgccctttgacgttggagtccacgttctttaatagtggactcttgttcca
    aactggaacaa
  • El ori que se encuentra tanto en E. coli como en
    los plásmidos son para hacer copias de DNA doble
    cadena. Pero el ori del fago o f1 ori hace una
    copia simple del DNA de cualquier secuencia que
    se encuentre colocada cerca en la orientación
    adecuada.
  • De hecho la región de la secuencia del fago
    contiene el origen de replicación para la
    síntesis y empaquetamiento del DNA cadena
    sencilla del bacteriofago. Por lo que cuando es
    incorporado en un plásmido, convierte al plásmido
    en una entidad que puede activamente vivir como
    DNA de cadena sencilla o doble.

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  • Un gene siempre tiene que ir flanqueado por una
    zona promotora y otra terminadora de la
    transcripción

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trangene
Secuencia de unión de la proteína represora
Secuencia que codifica para la proteína represora
19
Además el vector PET tiene la secuencia del
promotor T7 y de LacO cerca de la secuencia del
transgene
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Operón lac
  • El operón lac consta de tres genes estructurales
    (lacZ, lacY, y lacA), que codifican enzimas
    metabólicas implicados en la utilización de la
    lactosa como fuente de carbono.
  • Lac I codifica para una proteína represora
  • Operador es una secuencia a la que de manera
    específica se puede unir la proteína represora.
  • En presencia de una molécula que se una a la
    proteína represora se reprime la expresión de los
    genes

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Además el vector PET tiene la secuencia del
promotor T7 y de LacO cerca de la secuencia del
transgene
  • Promotor T7 lugar en donde se une la RNA
    polimerasa
  • Si el represor se une no hay transcripción del
    transgene.
  • Cuando hay inductor como el IPTG, se forma el
    complejo IPTG-represor y entonces la RNA
    polimerasa transcribe al transgene.
  • En presencia de una molécula como lactosa o un
    análogo se forma un complejo con la proteína
    represora y entonces el complejo no se une al
    operador y entonces la RNA polimerasa transcribe
    el gene.

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  • El inductor del operón lac que utilizaremos será
    el isopropiltiogalactósido (IPTG).
  • El IPTG suele utilizarse como inductor artificial
    del operón lac, ya que es capaz de unirse al
    represor LacI, pero no es un sustrato para la
    ß-galactosidasa y no puede ser metabolizado por
    la bacteria

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Vector con inserto
o
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El experimento
  1. Medio saturado
  2. Inocular una alícuota en medio nuevo
  3. Alcanzar la absorbancia en donde las células se
    encuentren en la fase log
  4. Añadir el inductor
  5. Tomar alicuotas (curso temporal de indución de
    proteína recombinante
  6. Separación y visualización en un gel de
    poliacrilamida-SDS
  7. Determinación del tiempo óptimo de inducción
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