Fremdblutsparende Ma - PowerPoint PPT Presentation

Title: Fremdblutsparende Ma


1
Fremdblutsparende Maßnahmen
2
Übersicht

• Warum überhaupt fremdblutsparende Maßnahmen
• Vorstellung der Maßnahmen im Einzelnen
• Durchführung einer Transfusion von aEK und aFFP
• Theoretische Erläuterung und praktische
  Demonstration von Geräten der KAI
• Praktische Übungen Umgang mit der Metro-Karte

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Warum Fremdblut sparen?

• Fremdblut ist kostbar und selten
• Übertragung von Infektionen
• das Immunsystem des Empfängers wird belastet
  (HLA-System, Immunsuppression) -gt post-OP
  Komplikationen sind teuer
• Preis für Gewinnung und Bereitstellung
  (Kreuzprobe)
• Verwechslungsmöglichkeit der Blutgruppe
• Vorgabe des Gesetzgebers
• Eigenblut ist nicht immer verfügbar (technisch,
  organisatorisch)

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Welche Maßnahmen gibt es?

• Präoperativ
• maschinell
• Eigenblutentnahme
• Plasmapherese und Thrombapherese
• medikamentös
• Erythropoietin-Gabe (EPO)
• Eisen-Gabe
• Intraoperativ
• Maschinell
• Autologe normovoläme Hämodilution ANH
• Maschinelle Autotransfusion MAT (z.B.
  Cell-Saver)
• Blau-Sauger an der Herz-Lungen-Maschine
• Patienten warm halten - nicht auskühlen lassen,
  Regionalanästhesie
• Medikamentös
• Antifibrinolytika (z.B. Tranexamsäure, Aprotinin,
  PAMBA)
• Kontrollierte Hypotension
• Postoperativ
• Wundblut-Retransfusion

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Eigenblutentnahme (EBE)

• Durch Blutspendedienst oder durch die Abteilung
  selbst (kleine Herstellungserlaubnis)
• Eigen-Erythrozyten-Konzentrate (aEK) sind 49 Tage
  haltbar
• Durch Entnahme von 3 aEK gewinnt man die
  Ery-Masse von 2 EK
• Kontraindikationen beachten
• muß dem Patienten ab 5 Wahrscheinlichkeit der
  Fremdblutgabe angeboten werden, ab 10 aber erst
  medizinisch sinnvoll

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Kontraindikationen der EBE

• Absolute KI
• Gefährdung des Patienten während oder nach der
  Entnahme
• frischer Myocardinfarkt (lt 3 Monate)
• instabile Angina Pectoris
• klinisch wirksame Aortenstenose
• dekompensierte Herzinsuffizienz
• Synkopen unklarer Genese
• Reduktion der Qualiät des Eigenblutes
• Akute Infektion mit Möglichkeit der hämatogenen
  Streuung (Yersinien !!!)
• Akute Erkrankung unklarer Genese
• Relative KI
• geringe Gefährdung des Patienten während oder
  nach der Entnahme
• alter Myocardinfarkt (gt 6 Monate)
• stabile Angina Pectoris
• Aortenstenose
• kompensierte Herzinsuffizienz
• Synkopen
• Reduktion der Qualiät des Eigenblutes
• Virale Infektionskrankheit (Hepatitis, HIV etc.)

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Durchführung der EBE / ANH

• Patienten aufklären (Verlustrisiko, Planbarkeit
  des Eingriffs, Infektionsrisiko)
• Patienten lagern, Monitoring
• Beschriftung des/der Blutproduktebeutel(s)
• Name, Vorname, Geburtsdatum
• Eigenblut oder beim Cellsaver alternativ
  CS-Blut oder ANH-Blut
• Hersteller (Entnehmender)
• Entnahmedatum
• Verfallsdatum
• Mengenangabe der Komponenten
• Produktangabe (Eigen-FFP oder Eigen-Erythrozytenko
  nzentrat)
• Identitätssicherung
• Desinfektion
• Punktion und Einlaufenlassen in sterilen
  Zitrat-Beutel
• gleichzeitig / danach Infusion von kristalloiden
  oder kolloiden Lösungen
• Verschluß mit Schlauchsiegeln und Siegel-Zange
• bei EBE Filtern Aufbereitung zu aEK und aFFP
• bei ANH Lagern - bis 6 Stunden

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(No Transcript)
9
Bestimmung der Blutgruppe des Patienten am Bett
(Bed-Side-Test)
Bestimmung der Blutgruppe des Patienten am Bett
(Bed-Side-Test) Wann muß der Test (durch die
Richtlinien zur Hämotherapie der
Bundesärztekammer gefordert) durchgeführt
werden Wann kann der Test entfallen Was kann
fakultativ noch getestet werden

• Bei Eigenblut immer Patient und Konserve testen
• Es muß Blutgruppenidentität vorliegen
• Die Kreuzprobe entfällt
• Bei ANH nur bei Raumwechsel des Beutels notwendig
  (Bestrahlung, Vorraum-gtOP-Wechsel)

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Durchführung des BST und Bewertung des
Testergebnisses

• Abnahme der Blutprobe selbst oder unter direkter
  Aufsicht
• In einem Antikörper-Test werden die
  Patientenerythrozyten mit Anti-A (gelbes Serum)
  und Anti-B (blaues Serum) gemischt.
• Eine Agglutination zeigt vorhandene Antigene auf
  der Erythrozyten-Oberfläche des Patienten.
• Test muß gut durchgeführt werden, damit weder im
  AG- noch im AK-Überschuß gearbeitet wird
• Diagnose muß eindeutig gestellt werden, damit
  hier Verwechslungen erkannt werden können und man
  EK und FFP hinterher kompatibel transfundieren
  kann
• Die Dokumentation ist sehr wichtig, daher
  unbedingt Ergebnis, Uhrzeit, Datum,
  Unterschrift in die Kurve
• Infektionsgefahr beim Einheften der Karten, daher
  Karten nicht abheften

• Der BST ist vom Arzt oder unter seiner
  unmittelbaren Aufsicht durchzuführen
• Abnahme einer Blutprobe vom Patienten
• Zugabe des Blutes zu Anti-A und Anti-B, bei
  Medtro-Karten mit einer Nadel - ggfs. vorher
  Belüftungsloch stechen
• Ablesen durch den Arzt - Diagnose
• Dokumentation mit Ergebnis, Datum, Uhrzeit,
  Arzt-Unterschrift in der Kurve
• Ergebniskarte nicht abheften!

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Wann muß der Bed-Side-Test durchgeführt werden?

• Vor jeder Gabe von blutgruppenkompatibel zu
  gebenden Produkten. Besonders vor FFP, die ein
  gleichgroßes Risiko bei Fehltransfusion
  darstellen, wurde der Test in der Vergangenheit
  oft vergessen.
• In jeder Schicht bzw. bei jeder erneuten Narkose
  muß der Transfundierende den Bedsidetest erneut
  machen
• Jeder Arzt selbst muß den Test erneut machen, er
  darf sich (z.B. bei Narkosen) nicht auf seinen
  Kollegen verlassen.
• Gerade im Notfall muß vor Applikation des ersten
  Fremdblutes (und am besten noch vor
  Plasmaexpander) Blut für die Blutgruppenbestimmung
  im Labor, dann Kreuzblut und dann das Blut für
  den Bedsidetst abgenommen werden - erst dann
  Fremdblut anhängen.
• Im Notfall gibt die Blutbank bei unbekannter
  Blutgruppe des Empfängers (zur Ausrüstung des
  Schockraumes) 0-Erythrozyten und AB-Plasmen
  heraus - nach Bekanntwerden der Blutgruppe des
  Empfängers ungekreuzte EK und FFP in der
  Blutgruppe des Empfängers. Das Kreuzprobenergebnis
  wird nachgeliefert.

• Vor jeder Gabe von TK, FFP, EK
• In jeder Schicht erneut
• Von jedem Arzt, der transfundiert
• Auch im Notfall !

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Wann kann der Test entfallen?

• Transfusion von mehreren Produkten nacheinander
  in einer Schicht oder einer Narkose durch den
  selben Arzt
• Im Zweifel erneut testen

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Ursachen von Verwechslungen

• Entnahme des Kreuzblutes vom falschen Patienten,
  vorher identität der Beschriftung mit dem
  Patienten prüfen
• Rückgabeversuch des Blutes an einen Patienten,
  für den das Blut nicht bestimmt ist
• fehlerhafte oder fehlende Beschriftung eines
  HLM/ANH/CS-Beutels

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Vorbereitung bei Transfusionen

• Bedsidetest (durchführen/dokumentieren)
• Konservencheck auf
• Hämolyse/Gasbildung/Verfärbung/Aggregate
• Abnahme- und Verfalldatum des Produktes
• Blutgruppe der Konserve
• Blutgruppenbestimmungsschein
• entfällt bei uns, wenn auf dem Konservenbegleitsch
  ein ein Aufkleber ist, der besagt, daß der KBS
  gleichzeitig der Schein i.S.d. Blutgruppenbestimmu
  ngsscheines ist (z.B. im Notfall, wenn noch kein
  BG-Bestimmungsschein ausgestellt ist).
• D.h., daß dieser Schein immer mitwandern muß -
  auch muß die Info über die Zahl der
  nachgekreuzten Konserven schriftlich
  weitergereicht werden
• Konservenbegleitschein mit
• Name des Patienten
• Blutgruppe des Patienten
• Blutgruppe der Konserve
• Nummer der Konserve
• Datum der Kreuzprobe (diese ist 72 Stunden gültig)

• Bedsidetest (durchführen/dokumentieren)
• Konservencheck auf
• Hämolyse/Gasbildung/Verfärbung/Aggregate
• Abnahme- und Verfalldatum des Produktes
• Blutgruppe der Konserve
• Blutgruppenbestimmungsschein
• Konservenbegleitschein mit
• Name des Patienten
• Blutgruppe des Patienten
• Blutgruppe der Konserve
• Nummer der Konserve
• Datum der Kreuzprobe

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Transfusion von EK/FFP/TK
Wir benutzen 200µm-Filter (weiß) (DIN 58360 TG)
für alle Blutprodukte - Ausnahmen Gerade
ANH-Blut muß über 200µm-Filter gegeben
werden Retransfusion von Wundblut durch
40µ-Filter (hier ist jedoch in den meisten
Cell-Savern ein 40µm-Filter eingebaut) Gelagerte
Vollblutkonserven, die es in Deutschland fast
nicht mehr gibt, würde man auch über 40µ-Filter
geben. Leukozytenfilter gibt es gar nicht
mehr Standzeit eines Filters ist 6 Stunden -
wenn er in dieser Zeit nicht verstopft, kann er
für beliebig viele Produkte genommen werden. Ein
angestochenes oder erwärmtes EK darf noch 6
Stunden gelagert werden. Erwärmung von EK nur bei
Kälteantikörpern und bei Massivtransfusionen (und
dann warme EK sofort transfundieren, da der
Erythrozytenstoffwechsel durch die Wärme wieder
aktiviert wurde). Das Erwärmen von z.B. 2 EK ist
oft deshalb schon sinnlos, weil das zweite EK
schon wieder auf Raumtemperatur ist, bevor es
gegeben wird. Es wird durch die Erwärmung nur
geschädigt (s.o.) Bei FFP ist die Halbwertszeit
außerhalb des Körpers von Faktor 7, von
Willebrand-Faktor und Protein C nur 1 1/2
Stunden. Also schnell geben nach
Erwärmung. Erwärmen nur in zugelassenen Wärmern,
nicht in warmem Wasser in einer Schüssel

• 200µm-Filter (weiß) (DIN 58360 TG)
• Durch großlumigen Zugang (nicht ZVK)
• Standzeit des Filters 6 Stunden
• EK nicht routinemäßig erwärmen
• FFP nur in zugelassenen Wärmern erwärmen

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Hinweise

• EK niemals in Kontakt mit gefrorenen FFP bringen,
  da so die konservenwandständigen Erythrozyten
  unter null Grad Celsius gefrieren und damit eine
  sofortige Hämolyse eintritt
• Bei Transfusion von EK wird nahezu kein Kalzium
  gebunden, da in EKs max. 20 ml Zitratplasma
  enthalten ist
• Blut nicht in die Blutbank zurückgeben, wenn es
  bald auch auf der ITS noch gebraucht werden
  könnte. Es muß nach Eintreffen in die Blutbank
  erst einmal 24 Stunden als Rückläufer stehen und
  es muß neues Blut für die ITS gekreuzt werden.
• Genaues Notieren, wann wieviel X-Blut abgenommen
  wurde - denn dies ist
• a) ein sparsamer Umgang mit den Resourcen
• b) erspart es Nachfragen in der Blutbank
• c) ist es manchmal aus juristischen Gründen
  wichtig, dies nachvollziehen zu können
• Für die Nachvollziehbarkeit von
  Transfusionszwischenfällen (bakteriell oder
  immunologisch) ist es notewendig, das Behältnis
  24 Stunden aufzubewahren

• EK niemals in Kontakt mit FFP bringen
• Bei Transfusion von EK wird kein Kalzium gebunden
• Blut nicht in die Blutbank zurückgeben, wenn es
  bald auch auf der ITS noch gebraucht werden
  könnte
• Dokumentieren, wann wieviel X-Blut abgenommen
  wurde
• Aufbewahrung des Behältnisses und Besteckes nach
  Transfusionsende 24 h im Kühlschrank

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Die Latham-Glocke
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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(No Transcript)
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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Aufbau einer MAT

• Sammelreservoir
• Antikoagulans-Lösung vorbereiten (40.000 IE
  Heparin in 1000 ml NaCl 0,9)
• Absaugschlauch der sterilen Schwester anreichen
  (lassen)
• Sammelreservoir in den Halter stecken
• Vakuumschlauch Verbindung zwischen Pumpe und
  Sammelreservoir herstellen (gelber Konnektor) -
  Sog max. 150 mmHg (durch Abknicken des
  Vakuumschlauches testen)
• Absaugschlauch am roten Konnektor des
  Sammelreservoirs anschließen
• Reservoir mit mindestens 150-200 ml
  Antikoagulanslösung vorfüllen
• Tropfgeschwindigkeit 60-180 Tropfen pro Minute
  oder 15 ml/100 ml abgesaugtes Blut
• MAT
• Waschset rechts am Haltegriff einhängen,
  Verpackung öffnen
• Retransfusionbeutel entnehmen, Rollenklemme
  schließen, aufhängen
• Zentrifugendeckel öffnen, Glocke gerade auf den
  Zentrifugenteller drücken - dabei nicht die
  Rutschkupplung beschädigen - Transportsicherung
  entfernen - Zentrifugendeckel schließen
• Abfallbeutel links an der Stange einhängen, mit
  dem kurzen Schlauchstück der Glocke verbinden
• Pumpenschlauchsegment in die Rollerpumpe
  einlegen, Schlauch in den Luftdetektor klemmen
• Farbig markierte Schläuche unter die
  entsprechenden elektrischen Verschlußklemmen
  legen
• Waschlösungs-Schläuche mit den Spike-Adaptern
  versehen, Klemmen schließen, an Waschbeutel (3 l
  NaCl 0,9) anschließen, Klemme öffnen
• Waschsetanschluß (blau) mit dem Reservoir (blau)
  verbinden
• Einschalten und Programm anlaufen lassen (P2 für
  beste Qualität, P3 für schnellstes Waschen)

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Waschen und Rückgabe

• Waschen mit möglichst geringen Pumpengeschwindigke
  iten
• Immer Glocke komplett füllen für optimale
  Waschqualität
• CS-Beutel vor dem Verlassen aus dem
  Verantwortungsbereich des OP-Anästhesisten an
  Patientenvene konnektieren

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Eigenblutentnahme
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ANH