LES GAMETES DANS LES VOIES GENITALES FEMININES

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LES GAMETES DANS LES VOIES GENITALES FEMININES

• Introduction
• Les spermatozoïdes
• Transport
• Capacitation
• Fécondation
• Lovocyte
• Captation
• Transport
• Fécondation

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LES SPERMATOZOIDES

• Rôle de transport/Transit des spermatozoïdes
• Capacitation des spermatozoïdes
• Fécondation de lovocyte

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• RÔLE DE TRANSPORT/TRANSIT DES SPERMATOZOÏDES

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(No Transcript)
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EJACULAT NORMAL

• SPERMATOZOÏDES
• PLASMA SEMINAL
• Volume 2 à 6 ml
• pH 7,2 à 7,8
• Abstinence

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SPERMATOZOIDES

• gt20.106/ML
• 40. 106/éjaculat
• Mobilité
• a rapide et progressive
• blente ou faiblement progressive
• c sur place
• dimmobile
• abgt50
• Morphologie normalegt30
• Vitalitégt75

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VAGIN

• Insémination des spermatozoïdes associés au
  liquide séminal (pH acide) 200 à 300 Millions
• Coagulation primaire
• Liquéfaction secondaire

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COL UTERIN

• Glaire cervicale
• Capacitation des spermatozoïdes

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(No Transcript)
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GLAIRE CERVICALE (1)

• Hydrogel visqueux
• Eau (98)
• Glycoprotéines (filaments)
• Albumine
• Enzymes (Phosphatases alcalines, lactate
  déshydrogénase)
• Acides aminés
• Sucres
• Lipides
• NaCl

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GLAIRE CERVICALE (2)

• Propriétés
• Abondance
• Filance/Elasticité
• Transparence
• Cristallisation
• VARIATIONS CYCLIQUES

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GLAIRE CERVICALE (3)

• PHASE FOLLICULAIRE PRECOCE/PHASE LUTEALE
• Faible abondance
• Non filante
• Cristallisation linéaire
• Réseau de mailles serrées
• DE J10 A J18
• Très abondante
• Filante/transparente/pH alcalin
• Cristallisation en feuilles de fougères (NaCl)
• Réseau de mailles lâches

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(No Transcript)
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(No Transcript)
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(No Transcript)
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CANAL CERVICAL

• Montée des spermatozoïdes dans le mucus cervical
• Mucus cervical ou glaire cervicale
• Stockage des spermatozoïdes dans les cryptes
  (0,1)
• Sélection Quantitative et Qualitative
• Polyspermie
• Test post-coital

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CORPS UTERIN

• Mauvaise survie
• Passage rapide/ Contraction musculeuse
• Phagocytose des spermatozoïdes

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(No Transcript)
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TROMPES

• Bonne survie
• Période préovulatoire stockage jonction
  trompe-utérus (quelques milliers)
• Libération progressive (quelques dizaines)
• Passage cavité péritonéale/Reflux trompe
• Rencontre ovocyte-spermatozoïde dans ampoule
  tubaire

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STRUCTURE DE LA TROMPE (1)

• Trompe utérine ou trompe de Fallope
• Longueur 12cm
• Quatre parties
• Segment intramural ou intertsitiel (Ostium
  utérin)
• Isthme
• Ampoule
• Pavillon (Ostium abdominal) franges tubaires

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(No Transcript)
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STRUCTURE DE LA TROMPE (2)

• Quatre couches
• Muqueuse
• Musculeuse
• Sous-Séreuse
• Séreuse (péritoine)

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STRUCTURE DE LA TROMPE (3)

• Quatre couches
• Muqueuse
• Epithélium simple / Replis
• Cellules ciliées
• Cellules sécrétrices ou glandulaires
• Chorion conjonctif
• Musculeuse
• Deux à trois couches
• Sous-séreuse et séreuse

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(No Transcript)
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(No Transcript)
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STRUCTURE DE LA TROMPE (4)

• Variations topographiques
• Ampoule pavillon
• Nombreux replis/Cellules ciliées
• Musculeuse (deux couches, circulaire et
  plexiforme)
• Isthme
• Replis faibles/Cellules sécrétrices
• Musculeuse (trois couches, circulaire,longitudinal
  e et plexiforme)

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(No Transcript)
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STRUCTURE DE LA TROMPE (5)

• Variations cycliques
• Phase folliculaire (Oestrogènes)
• Cellules ciliées plus nombreuses plus hautes
• Battements ciliaires vers utérus
• Musculeuse contractions des deux extrémités
• Phase lutéale (Progestérone)
• Cellules plus basses et plus rares
• Battements ciliaires vers utérus
• Musculeuse contractions vers utérus

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FLUIDE TUBAIRE (1)

• Substances dorigine plasmatique (transsudation)
  Albumine
• Synthèse tubaire (glycoprotéines)
• Ions
• Na et Mg2/Plasma
• K et Cl-
• Viscosité Isthme

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FLUIDE TUBAIRE (2)

• Survie des spermatozoïdes
• Transport des spermatozoïdes reflux de listhme
  vers lampoule

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FLUIDE TUBAIRE (2)

• Facteurs capacitants
• Albumine
• Glycosaminoglycanes (Héparine)
• Taurine (contrôle de la capacitation)
• Protéases
• Modification de la composition en lipides
  membranaires spermatiques

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• CAPACITATION DES SPERMATOZOÏDES

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• Transformation du spermatozoïde
• Reconnaissance de la zone pellucide ovocytaire
• Fixation à la zone pellucide ovocytaire
• Changement de la mobilité Hyperactivation

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• Où ?
• Utérus
• Trompes
• Elimination préalable du plasma séminal (Col)
• Phase folliculaire lente
• Ovulation rapide
• Phase lutéale absente

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• Comment ?
• In vivo
• -Enlèvement des protéines de revêtement de la
  membrane plasmique
• -Enlèvement du cholestérol
• -Modifications des chaînes oligosaccharidiques
• Entrée du Calcium
• Mobilité des protéines membranaires

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• Enlèvement des protéines de revêtement de la
  membrane plasmique
• Glycosaminoglycanes (voies génitales
  féminines)/Protéines spermatiques avec récepteurs
  pour les glycanes
• Albumine
• pH utérin lt6,5

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• - Migration antéro-équatoriale des protéines
• - Redistribution sur spermatozoïdes
• - Perte de protéines
• - Adjonction de protéines
• - Modifications biochimiques

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• -Enlèvement du cholestérol
• Albumine
• Lipoprotéine HDL
• -Modifications des chaînes oligosaccharidiques
• Entrée du Calcium
• Enzymes génitales

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• Comment ?
• In vitro
• -Albumine sérique
• -Héparine
• -Accepteurs de cholestérol (Albumine-Lipoprotéine
  s)
• Fortes concentrations de spermatozoïdes
• Capacitation spontanée (1 à 10 heures)

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• Conséquences ?
• 1-Accessibilité des récepteurs spermatiques à la
  zone pellucide
• 2-Augmentation de la perméabilité au Calcium
• 3-Augmentation de la fluidité membranaire
  (Mouvements des protéines membranaires)
• 4-Modification de la mobilité du spermatozoïde

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• Conséquences ?
• 1-Accessibilité des récepteurs spermatiques à la
  zone pellucide
• 2-Augmentation de la perméabilité au Calcium
• REACTION ACROSOMIQUE

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• Conséquences ?
• 3-Augmentation de la fluidité membranaire
  (Mouvements des protéines membranaires)
• 4-Modification de la mobilité du spermatozoïde
• HYPERACTIVATION

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CHANGEMENTS METABOLIQUES ET BIOCHIMIQUES

• Augmentation de la perméabilité aux ions calcium
• Elévation du pH interne
• Augmentation de lactivité métabolique

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Capacitation du spermatozoïde

• Spermatozoïde à la sortie de l'épididyme
  mobiles mais non fécondants
• in vivo "rabotage" du spermatozoïde par le
  mucus cervical le spermatozoïde respire plus
  vite !
• Ablation d'un manteau protecteur de la membrane
  du spermatozoïde
• Aucune spécificité (espèce organe)

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Difficile à apprécier

• Aucun critère morphologique
• Fertilité insatisfaisant
• Réaction acrosomiale insuffisant
• il peut y avoir réaction acrosomiale sans
  capacitation
• Il peut y avoir capacitation sans réaction
  acrosomiale
• Attention à la sénescence / mort du spermatozoïde)

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Capacitation

• Spermatozoïde épididyme ? stabilisation de la
  membrane du spermatozoïde
• Spermatozoïde épididyme liquide séminal ?
  stabilisation encore plus grande de la membrane
  du spermatozoïde
• Certains composants du plasma séminal sont
  fortement liés aux spermatozoïdes éjaculés

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Noyau

• Capacitation ? stabilité du noyau accrue
  (pourtant déjà très stable)
• Stabilisé par -S-S Zn

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Acrosome pro acrosine ? acrosine

• Aucun changement majeur de la forme de lacrosome
  pendant la capacitation
• In vitro proacrosine ? acrosine en présence de
  glycosaminoglycannes
• Comment se fait la traversée des deux membranes ?
• Les enzymes de lacrosome restent-elles
  inactives, ou sont elles actives pendant la
  capacitation ?

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Capacitation?AMPc

• Deux types dadénylyl cyclase
• Adénylyl cyclase transmembranaire
• Adénylyl cyclase soluble
• Insensible aux protéines G ou forskoline
• Régulée par HCO3- et Ca
• Élévation de AMPc ? augmentation de la protéine
  kinase AMPc dépendante (PKA)

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Membrane plasmique

• Modifications importantes de la membrane au cours
  de la capacitation
• Redistribution (effondrement de lasymétrie)
• Le manteau retiré (ou altéré) pendant la
  capacitation renferme les facteurs de
  décapacitation
• Origine séminale
• Caltrine
• Glycoprotéines
• Spermine
• Antigènes
• Origine épididymaire
• Acrosome sabilizing protein

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Hyper activation du spermatozoïde

• Définition mouvement frénétique des
  spermatozoïdes avant la réaction acrosomiale

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CHANGEMENT DE LA MOBILITE

• Augmentation de la vitesse de déplacement
  linéaire des spermatozoïdes
• Augmentation de lamplitude de déplacement du
  flagelle
• Augmentation de lAMPc intracellulaire
• Modification de la trajectoire

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Mouvement avant et pendant lhyperactivation
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3) Rôle physiologique de l'hyperactivation

• Corrélation positive entre mobilité hyperactive
  et fécondation
• L'hyper activation est probablement physiologique
• Aide le spermatozoïde à se détacher de
  l'épithélium de l'isthme tubaire
• Aide le spermatozoïde à nager dans le liquide
  tubaire
• Traversée de la ZP

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Capacitation et hyperactivation

• Capacitation
• Modifications de la membrane plasmique de la tête
  ? réaction acrosomiale ?
• Traversée de la ZP ? fusion œuf spermatozoïde
• Modifications de la membrane plasmique de la
  queue ? hyperactivation
• Traversée de la ZP ? fusion œuf spermatozoïde

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Hyper activation du spermatozoïde modèle
hypothétique

• Intervention des protéines G
• Activation des canaux calciques
• Augmentation du Ca
• Activation de adénylyl cyclase

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Vraie ? fausse hyper activation

• Vraie spermatozoïdes vivants
• Fausse spermatozoïdes moribonds
• Le Ca entre par la membrane plasmique qui perd
  sa perméabilité

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LOVOCYTE

• Capter lovocyte ovulé
• Transport vers le lieu de fécondation
  Ampoule/Isthme

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(No Transcript)
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(No Transcript)
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(No Transcript)
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LOVOCYTE

• Transport vers le lieu de fécondation
  Ampoule/Isthme
• Contractions des fibres musculaires lisses
• Battements ciliaires
• Viscosité des sécrétions tubaires
• Contractions de la musculeuse
• Œdème de la paroi
• Fluide tubaire