Grupo:1106

1
Universidad Nacional Autonoma de México Facultad
de Estudios Superiores Iztacala Evaluación de
crecimiento de plantas de Pisum sativum l.
(chicharo) tratadas con aguas residuales y
sometidas a estrés lumínico.  

• Grupo1106
• García García Edgar Asael
• Ruiz Castellanos Andrés
• Vargas Hernández Juan José
• Morales Aguilar Maricarmen

2
Chícharo (Pisum sativum L. )

• Una de las plantas de mayor importancia en México
  es el chícharo, un cultivo de gran importancia
  para la dieta del mexicano.
• Origen Suroeste de Asia se encuentra en la
  región del Mediterráneo y México
• Clasificación lisas y arrugadas

3

• La luz f
  fotosíntesis
• Sobrexcitación de los fotosistemas,
  especialmente al fotosistema II (PSII) a
  intensidades moderadas de luz.
• A iluminación escasa de la mano de
  temperaturas bajas el fotosistema I (PSI)

4

• Aguas residuales
• México ocupa el segundo lugar en uso de aguas
  negras para riego
• Composición física, química y biológica
• Color y olor
• Sales minerales, arcillas, lodos, arenas,
  carbonatos y sulfatos.

5

• El estrés
• Alteraciones en todos sus procesos a nivel
  molecular y celular.
• Factores bióticos o abióticos como son
  condiciones ambientales.

Crecimiento y el rendimiento Efecto sobre las
eficiencias de intercepción Utilización de la
luz absorbida por las plantas
6
Antecedentes
Autor y Año Titulo Aportación
Cogliatti, D.H. M.F. Cataldi y F. Iglesias 2003 Estimación del área de las hojas en plantas de trigo bajo diferentes tipos de estrés abiótico Biomasa de trigo bajo condiciones de estrés hídrico y luminoso.
Serpa. F, Rodriguez, J 2005 EFECTO DEL ESTRÉS POR SALINIDAD EN CUATRO CEPAS DE Dunaliella salina TEOD. EN EL PERÚ Medición de clorofila a y b carotenoides
Gonzales. J etol. 2001 Efecto de la temperatura, el éstres hidrico y luminoso sobre la heterogeneidad del fotosistema II en cuatro variedades de poroto Medición de fotosistema bajo condiciones de estrés.
7
Objetivos

• General
• Determinar el crecimiento de chícharo (Pisum
  sativum ), regado con aguas negras y sometido a
  estrés lumínico.
• Particulares
• Cuantificar la producción de clorofila, lípidos,
  carbohidratos y actividad enzimática de las
  peroxidasas.
• Determinar el área foliar e índice de área foliar
  de las plantas.

8
METODOLOGÍA
9
Diseño experimental

• Agua cruda residual

Agua potable ()
Agua residual 1er nivel
Malla de sombra 35 10 plantas
Malla de sombra 35 10 plantas
Malla de sombra 35 10 plantas
Malla de sombra 50 10 plantas
Malla de sombra 50 10 plantas
Malla de sombra 50 10 plantas
Luz directa () 10 plantas
Luz directa () 10 plantas
Luz directa () 10 plantas
10

• Cuantificación de Clorofila y Carotenos

Se macero 5g de hojas de pasto con alcohol
etílico 96
El extracto fue filtrado y se llevo 3ml a
espectrofotómetro.
Se midió absorbancia a 665nm, 649nm y 470 nm.
11
Guaiacol peroxidasa
2g de material vegetal (pasto)
Maceración en frio con 4ml de buffer fosfatos.
Centrifugación a 10,000rpm 10min
Espectrofotometría a 470nm Adicionando a la
cubeta Guaicol 16mM 400ml Buffer fosfato 20mM
1ml Agua oxigenada 10ml
Lectura cada 30seg durante 3min usando como
blanco Guaicol Agua oxigenada buffer
Adición al final de Extracto vegetal 20ml
12
Catalasas
Maceración en frio con 4ml de buffer fosfatos.
Se pesaron 2g de material vegetal (zapote blanco)
Centrifugación a 15,000rpm 5 min
Espectrofotometría a 240nm Adicionando a la
cubeta de cuarzo buffer fosfatos 1ml H2O2 30
Lectura cada 30seg durante 3min usando como
blanco Agua oxigenada buffer
Adicion al final de Extracto vegetal 1ml
13
Determinación de lípidos
14
CUANTIFICACION DE CARBOHIDRATOS (MÉTODO DE
NELSON- SOMOGYI)
Se prepararon 8 tubos con diferentes
concentraciones de patrón de glucosa, agua
destilada, reactivo de cobre y muestra.
Los tubos se colocaron a baño maría durante 20
min. Y se enfriaron con agua corriente.
Se leyó la absorbancia a 540 nm
Se les agrego 1 mL de reactivo de
arsenomolibdato y 7.5 mL de agua destilada.
15
Guaiacol peroxidasa
2g de material vegetal (pasto)
Maceración en frio con 4ml de buffer fosfatos.
Centrifugación a 10,000rpm 10min
Espectrofotometría a 470nm Adicionando a la
cubeta Guaicol 16mM 400ml Buffer fosfato 20mM
1ml Agua oxigenada 10ml
Lectura cada 30 seg durante 3 min usando como
blanco Guaicol Agua oxigenada buffer
Adición al final de Extracto vegetal 20ml
16
Área foliar e Índice de área foliar
4 plantas por unidad experimental
Solo se mediran más de 50 de color verde
modelo LICOR LI300
17
Gracias por su atención