Title: Genotoxicit
1Genotoxicitás
- Genotoxicitási tesztek
- Bakteriális reverz mutáció teszt
- In vitro mikronukleusz teszt
2A genotoxicitás szintjei Kromoszóma típusú
mutációk (szerkezeti, számbeli változás) Pontmutá
ciók
egy vagy néhány bázis -
cseréje - kiesése - beékelodése
silent, missense, nonsense
frame-shift, leolvasási keret eltolódása
A genotípus megváltozása nem mindig vezet a
funkció (fenotípus) megváltozásához
(silentcsendes mutációk, mutáció nem kódoló
régióban) A mutáció lehet káros, semleges,
elonyös
3Mutagén Karcinogén
- a mutagén fizikai vagy kémiai ágens, mely
növeli a mutációk képzodésének gyakoriságát - indukált mutáció a mutagének által okozott
változások a genetikai állományban - a halálozások oka a civilizált világban 40-ban
rákos daganat - - a rákos megbetegedések közel 90-át a
környezetünket szennyezo mutagének okozzák - - a mutagén vegyületek nagy része rákkelto
(karcinogén) is !!!!!!!!!!!! - - évente néhány ezer olyan vegyületet állítanak
elo, amelyek korábban nem léteztek a Földön
(gyógyszer alapanyagok, növény- vagy faanyagvédo
szerek, élelmiszer-adalék, kozmetikum, háztartási
vegyszer stb.) - a mutagének és a karcinogének közötti szoros
kapcsolat szükségessé teszi a környezetünkben
lévo mutagén vegyületek kimutatását
4Spontán mutációk
- okai
- a bázisok alternatív formái (keto/enol,
amino/imino tautomerizáció) - a replikáció során a szálak elcsúszása
következtében kisméretu inszerciók és deléciók
keletkezése - - a DNS szerkezeti változásai (depurináció és
deamináció, amelyek a bázisok párosodási
tulajdonságait változtatják meg)
5Tautomerizáció
Normál bázispárosodás (keto és amino formák)
A guanin enol formája timinnel, az adenin imino
formája pedig citozinnal képes H-híd
kialakítására.
A citozin imino formája adeninnel, a timin enol
formája pedig guaninnel képes H-híd
kialakítására.
A párosodási hiba a replikáció során az újonnan
szintetizált szálban megmarad és állandósul
6- Indukált mutációk
- külso okokból származó mutációk
- vegyszerek számos módon okozhatnak mutációkat
- bázis analógok a DNS-be beépülnek, de nem a
megfelelo bázissal párosodnak - alkiláló, deamináló szerek, oxidáló anyagok a
DNS bázisok szerkezetét és párosodási
tulajdonságait megváltoztatják - interkaláló szerek a bázisok közé ékelodnek és
nukleotid inszerciót vagy deléciót okoznak
7Bázis analógok
a természetes bázisokhoz hasonló szerkezetuek, a
DNS polimeráz a kettos spirálba beépíti
pl. 5-brómuracil (5BU) timin analóg adeninnel és
guaninnal is (!) képes párosodni tranziciót okoz
T-Agt5BU-Agt5BU-GgtC-G C-Ggt5BU-Ggt5BU-AgtT-A 2-amin
opurin (2AP) adenin analóg a timinen kívül
citozinnal is (!) képes párosodni tranziciót
okoz T-AgtT-2APgtC-2APgtC-G C-GgtC-2APgtT-2APgtT-A
8Alkiláló szerek
alkil (-CH3, -CH2-CH3) csoportokat építenek a
nukleinsavak bázisaira és azokat módosítják
pl. etil-metánszulfonát (EMS) foként a guanint,
kisebb mértékben a timint módosítja a
6-etilguanin timinnel párosodik, ami C-GgtT-A
tranzíciót eredményez a 4-etil-timin a guaninnal
párosodik, és így T-AgtC-G tranzíció jön létre
9Deamináló szerek a spontán deamináción kívül
különbözo vegyszerek is képesek a bázisok amin
csoportjait támadni
pl. salétromossav a citozint, az adenint és a
guanint támadja citozin uracil, mely a
következo replikáció során adeninnel párosodik és
C-G gt T-A tranziciót okoz adenin
hipoxantin, ami citozinnal párosodva T-A gt C-G
tranziciót eredményez guanin xantin, ez
elsosorban citozinnal, de kisebb mértékben
timinnel is párosodva C-G gt T-A tranziciót hoz
létre hidroxilamin a citozin amino csoportját
támadja, és hidroxilaminocitozin keletkezését
okozza a hidroxilaminocitozin adeninnel
párosodik, és C-G gt T-A tranziciót okoz
10Interkaláló vegyületek
- általában gyurus vegyületek, melyek
térkitöltése a bázispárokhoz hasonlít - a DNS
kettos spirálban egymás melletti bázispár közé
képesek beépülni - a beépülés a kettos spirál
alakját torzítja, ami azután a replikáció során
egy nukleotid kiesését vagy beépülést
okozza pl. proflavin akridin sárga etidium-bromid
dioxin
11A genotoxicitás mérése
- többféle, nemzetközileg elfogadott tesztrendszer
- bakteriális tesztek (Salmonella typhimurium,
Esherichia coli) - eukarióta egysejtuek (pl. Saccharomyces
cerevisiae, Aspergillus nidulans) - élesztogomba penészgomba
-
- rovarok (ecetmuslica Drosophila melanogaster)
- gerincessejt-vonalak (humán és egyéb emlos
sejtvonalak) - növények (lóbab, árpa, vöröshagyma)
- in vivo (egér, hörcsög, patkány)
12Alternatív ( in vitro) genotoxicitási tesztek
- állatkísérletek számának csökkentése
- gyors (short term study)
- - költséghatékony
- Végpontok
- pontmutáció
- DNS törés
- repair (DNS szintézis NEM az S fázisban)
- kromoszóma aberrációk
13Mutációk detektálása
- - a fajok nemzedékrol nemzedékre mutatott
állandósága arra utal, hogy a mutációk
bekövetkezése ritka esemény - a valóságban azonban a megfigyelhetonél jóval
több mutáció keletkezik - körülbelül 1,000,000,000,000,000,000 (1018) DNS
sérülés minden felnott emberben naponta! - kb. 30.000.000.000 (3x1010) sejtünk van . . .
(3x107/nap/sejt) - mivel leggyakoribbak a recesszív mutációk, a
legtöbb új mutáció észlelését a dominancia
megakadályozza - az új mutációk észlelése ezért a legegyszerubb a
haploid szervezetekben - diploidokban a mutációk kimutatására speciális
rendszerek szükségesek - - a mutációk gyakorisága alacsony, ezért
mutánsokat nagy egyedszámú populációból lehet
kimutatni
14- Bakteriális reverz mutagenitási teszt
- Kidolgozója, Bruce Ames után AMES teszt
- Validált (OECD Guideline 471)
- Pontmutációk észlelésére alkalmas
- Több humán genetikai betegség pontmutációkra
vezetheto vissza. - Baktérium törzsek auxotróf mutánsok
- Salmonella typhimurium his- hisztidint és
biotint igényel - Escherichia coli trp- triptofánt igényel
- - nem képesek minimál táptalajon növekedni
- megnövelt mutációs érzékenység
- megnövekedett sejtfal átereszto képesség
- DNS hibajavító rendszer kiküszöbölése
- metabolikus aktiválás kell S9 frakció
- patkány májából készült enzimkivonat
- a baktériumok nem rendelkeznek oxidatív
metabolizáló enzimrendszerrel
Nagy populációban bekövetkezo ritka mutációs
esemény detektálására alkalmas
15A baktériumok által képzett telepek
Salmonella
E. coli
16Salmonella typhimurium his- mutánsainak
reverzióját figyelik a tesztelendo vegyületek
hatására
Reverzió back mutáció
his Hisztidint szintetizál Hisztidinmentes
tápközegben életképes
his- Hisztidin bioszintézisére képtelen Csak
hisztidint tartalmazó tápközegben életképes
Escherichia coli trp- mutánsainak
reverzióját figyelik a tesztelendo vegyületek
hatására
17- A teszttörzsek jellegzetességei
- Különbözo típusú his mutációkat tartalmaznak,
ezért a mutáció reverziója történhet - bázispár szubsztitúcióval
- frame-shift segítségével
- különbözo hatásmechanizmusú mutagén vegyületek
mutathatók ki, azaz információt nyújt a - genotoxikus anyagok által eloidézett mutációk
típusáról
18A kísérlet kivitelezése
19A kísérlet kivitelezése
S9 patkány májából készült enzimkivonat S9-et
adagolva modellezni lehet az emlosökben lezajló
enzimatikus reakciókat, így a bakteriális
géntoxikológiai tesztekbol következtethetünk a
szennyezoanyagok magasabb rendu szervezetekre
gyakorolt hatására
20Pozitív kontroll ellenorzése
21Az eredmények értékelése
- A kísérleti anyag mutagénnek tekintheto, ha
- A kísérleti anyaggal kezelt lemezek
revertánsszámai a kontroll lemezek
revertánsszámaihoz képest koncentrációfüggo
növekedést mutatnak - A revertánsszámok reprodukálható, biológiailag
jelentos növekedést mutatnak legalább egy
koncentrációcsoportban, legalább egy
baktériumtörzsnél metabolius aktiváló rendszer
hozzáadásával vagy anélkül - Törzsek TA 1535, TA100, TA98, TA 1537 és TA 102
vagy E. coli WP2uvrA - Biológiailag jelentos törzsenként változik
(2-szeres, 3-szoros) - Statisztikai értékelés nem szükséges
22Továbbfejlesztett Ames teszt (Ames II) 96 lukú
mikrotitráló lemezen 6 törzzsel (TAMix) végezheto
egyszerre pH indikátor festék a tápközegben
(brómkrezol lila) A hisztidinmentes tápközegben
szaporodó (revertált) baktériumok savasítják a
tápközeget
Lila nem mutáns Sárga back-mutáns
23In vitro mikronukleusz teszt Validált (OECD
Guideline 487) Kromoszóma mutációk kimutatására
alkalmas Kb 80 egyezés a kromoszóma aberráció
teszttel, érzékenyebb, olcsóbb,
gyorsabb Mikronukleusz a sejtmagnál kisebb
méretu, membránhatárolt DNS darabok, amelyek a
citoplazmában jelennek meg a sejtosztódás zavara
esetén
24In vitro mikronukleusz teszt Citotoxikus
ágensre adott sejtválasz
25In vitro mikronukleusz teszt Citotoxikus
ágensre adott sejtválasz
26In vitro mikronukleusz teszt - acentrikus
kromoszóma fragment klasztogén anyag -
centromérral rendelkezo fragment aneugén
anyag
(a) a mikronukleusz acentrikus kromoszóma
fragmensbol származik (b) a mikronukleusz egész
kromoszómát tartalmaz
A klasztogén anyagok törést okoznak a DNS-ben,
így az osztódás során kromoszóma fragmentek
veszhetnek el, vagyis mikronukleusz képzodhet
belolük. Az aneugén anyagok olyan változást
okoznak a sejtosztódásnál, ami aneuploidiához
vezet. Az aneuploidia a normális diploid
kromoszómaszámtól való eltérés, vagyis például
egy teljes kromoszóma elvesztése, avagy
mikronukleusszá való alakulása.
27A mikronukleusz képzodés módjai
28A mikronukleusz képzodés módjai
29A mikronukleusz képzodés módjai A genetikai
anyag a sejtmembrán felé áramlik. Ezek szerint a
mutagén anyaggal való expoziót követoen eloször a
sejtmag alakja változik meg, bimbózni kezd, majd
a sejtmagból kizárt DNS darabkák mikronukleusz
formát öltenek, és ezt követoen még a sejtbol is
kizáródhatnak mini sejt formájában.
A exponált sejt B metafázis C poliploid
metafázis D poliploid sejtmag E szabálytalan
sejtmag F bimbózó sejtmag G szabálytalan
sejtmag és mikronukleusz H szabálytalan sejtmag
és mini sejt
30In vitro mikronukleusz teszt A kísérlet
kivitelezése sejtek felszaporítása kísérleti
anyag koncentráció sorával való kezelés,
kontrollok rátenyésztés citokelazinB
hozzáadásával a tenyésztés terminálása kicseppent
és, festés, fedés
A kísérlet értékelése mikronukleált binukleáris
sejtek összes sejthez való viszonyítása morfológi
ai kritériumok MNltsejtmag/3 jól szeparált,
nem bimbózó azonos festodési intenzitás a
sejtmaggal