CONTAMINACI N BACTERIANA Responsabilidades en las pr cticas

1
CONTAMINACIÓN BACTERIANA

• Responsabilidades
• en las prácticas
• de Hemoterapia
• T.H. Alejandro Palomeque

2
CONTAMINACIÓN BACTERIANA EN LA TRANSFUSION

• Informe FDA (Food and Drugs Administration).
• Annual Summary for Fiscal Years 2005 and 2006.

3
Síntomas y signos en el receptor

• Escalofríos.
• Fiebre elevada gt38ºC (o aumentogt 1ºC respecto al
  estado pre T.)?
• Taquicardiagt120pm(o aumento gt 30 p.m. respecto al
  estado pre T.)?
• Hipotensión arterial severa PAs lt90 mm Hg.
• Náuseas.
• Vómitos.
• Diarrea.
• Disnea.
• Oliguria lt 20ml / h

• SHOCK
• CID
• MUERTE

4
CONTAMINACIÓN BACTERIANA EN LA TRANSFUSION

• FACTORES DE DESENLACE
• Cantidad de bacterias transfundidas.
• Tipo de bacterias.
• Velocidad de transfusión.

5
Cantidad de bacterias transfundidas proporcional
a los días de almacenamiento

• HC contaminado al inicio - 1 a 10 UFC/ml
• Días de conservación . . . . .1x106 UFC/ml

6
CONTAMINACIÓN BACTERIANA SD



Clinical Microbiólogy Reviews , jan. 2005.
American Society forMicrobiólogy

• Frecuencia 1/ 1 000 000
• Reporte FDA período 1976-1998
• 26 MUERTES 12 millones de unidades transfundidas
  1 / 460 000.
• SEPSIS - 1 / 250 000. Nueva Zelandia 1/65
  000 casos sintomáticos
• Evento ACELERADO Y CATASTRÓFICO.
• INICIO RAPIDO.
• ALTA TASA DE MOTALIDAD.
• GÉRMENES mayoritariamente Gram negativos
• (más de 25 días de conservación)?

7
CB /SD Gérmenes Gram negativos

• 46 Yersinia Enterolcolítica
• 25 Pseudomonas spp
• 11 Serratia ssp
• 18 Enterobacter
• Acinetobacter ssp.
• Escherichia coli
• Klebsiella pneumoniae
• Salmonella enteritidis

8
Yersinia Enterocolítica

• Gastroenterocolitis
• Utiliza citrato y hierro para su reproducción
• Aspecto de la bolsa
• Color
  oscuro, coágulos, hemólisis

• Diarrea
• Febrícula o fiebre
• Dolor abdominal
• Síntomas leves o asintomáticos

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CONTAMINACIÓN BACTERIANACP

• Clinical Microbiólogy Reviews , jan. 2005.
  American Society forMicrobiólogy
• Alcanza a 1 / 1000 a 1/ 2000 CP
• Sépsis 1 / 20 000 transfusiones
• Mortalidad 1 / 7500 a 1/100000 transfusiones
• Organismos implicados, en su mayoría Gram
  positivos
• Aparición de cuadro clínico hasta 6 a 8 hs. de
  iniciada la transfusión.

10
CB / CP organismos implicados

• 42 Estafilococo coag. Neg.
• Estafilococo aureus
  
• 12 Estreptococo spp
• 9 Bacilus cereus
• 9 Escherichia Coli
• 9 Salmonella spp
• 8 Serratia spp
• 7 Enterobacter spp

• Gram positivos
• Gram negativos

11
Organismos identificados en los estudios BaCon,
SHOT y BACTHEM (EEUU-Reino Unido-Francia ) CP

• Gram positivos
• Gram negativos

• Clinical Microbiólogy Reviews , jan. 2005.
  American Society forMicrobiólogy
• 41 casos
• 4 mortales 10
• Estafilococos coag. neg.gtBacilus cereusgt
• Estreptococos aureus
• 20 casos
• 13 mortales 60
• E.ColigtEnterobactergtSerratiagtAcinetobactergt
• KlebsiellagtYersinia E.

12
CONTAMINACIÓN BACTERIANAPF y Crioprecipitados

• Clinical Microbiólogy Reviews , jan. 2005.
  American Society forMicrobiólogy
• Organismos implicados
• Burkholderia cepacia
• Pseudomonas aeruginosa

13
Disminución del riesgo de CBESTRATEGIAS

• 1- Selección del Donante de Sangre
• Temperatura.
• Procesos infecciosos, toma ATB.
• Síntomas gastrointestinales (último mes) -
  Yersinia E., Salmonella.
• Infecciones urinarias - Escherichia Coli,
  Klebsiella
• Procedimientos odontológicos- Estreptococos
  mitis, Estreptococos viridiams, Estafilococos
  aureus, Estafilococos epidermidis
• DONANTE AUTOLOGO - Historia clínica-
  internaciones, trat.medicamentosos, técnicas
  invasivas fibrocolonoscopía, proc.
  genitourinarios, V.V.Central.
• E.T.S Gonococo, Chlamidia, Mycoplasma, T.
  Pallidum

14
Disminución del riesgo de CBESTRATEGIAS

• 2- Preparación del sitio de venopunción
• Gérmenes - Estafilococos Coagulasa negativos
  (E.Epidermidis), Micrococos ssp., Bacilus cereus.
• Uso de moñas de gasa esteril o torundas de
  algodón?
• Antisepsia en espiral y uso correcto de
  antisépticos.
• NO palpar vena luego de hecha la antisepsia.
• Elección del antiséptico
• Lavado del brazo con detergente clorhexidina 4
  en hemodiálisis y oncología.

• Alcohol Etílico 70º
• Alcohol-Yodado 2
• Yodopovidona
• Clorhexidina alc. 0.5
• Clorhexidina alc. 2

15
Comité Infecciones COCEMI / FEMI
16
Disminución del riesgo de CBESTRATEGIAS

• 3 Eliminación de los primeros
• 30 ml de sangre durante la extracción
• 4 Leucorreducción universal
  Filtros LR en línea
• 
  Las bacterias que han sido
  fagocitadas, pero no .
  
  destruidas, son removidas con los leucocitos.
• 
  Los organismos pueden ser
  adsorbidos a los
  .
  leucocitos uniéndose
  indirectamente a las fibras.
• 
  
• 
  También pueden adherirse
  directamente al filtro.
  

17
(No Transcript)
18
Disminución del riesgo de CBESTRATEGIAS

• 5- Sustitución de la transfusión de CP por CPDU
• 6- Inactivación de patógenos
• (Interacción con los ác. Nucleícos,
• previene transcripción y replicación de
  patógenos)
• 7- Cultivos Automatizados
• de Bacterias

• Psoralen Luz ultravioleta
• Riboflavina Luz visible
• El sistema Bact/Alert (FDA)
• (BioMerieux,Durham,NC) USA y Europa
• Detecta a las bacterias basado en la producción
  de CO2
• Y es capaz de detectar lt1 x 10 2 UFC/mL de
  bacterias
• Pall (FDA)?
• ( Pall BDS Pall Medical, EastHills, NY)

19
Disminución del riesgo de CBESTRATEGIAS

• 8- Inspección visual. Cambios de apariencia
• S.Desplasmatizada
• Color púrpura o negro
• Coágulos
• Hemólisis
• C.Plaquetarios
• desaparición del swirling.

• Multiplicación bacteriana consumo de O2,
  desaturación de la Hb, hemólisis utilización del
  hierro en metabolismo de Yersisnia E.
• Metabolismo de las Bacterias provoca disminución
  del Ph plaquetas esféricas. Sensibilidad 1x107
  UFC

20
Riesgos en la manipulación del HC

• Defectos en la fabricación de la bolsa de sangre.
• Rotura de bolsa durante el procedimiento
• Serratia marcescens
• Medio ambiente- Durante el procesamiento de HC
• Serratia marcescens, Flavobacterium, Bacilus
  ssp., Pseudomonas ssp.
• Uso incorrecto del Baño María
• Pseudomonas ssp.
  
• 
  

21
PRODUCCIÓNDE FRACCIONES de SD
PARATRANSFUSION ENPEDIATRÍA
22
PRODUCCIÓN DE FRACCIONES de SDPARA PEDIATRÍA

• Racionalización del uso de un HC
• Protocolos de Transfusión.
• Irradiación con rayos Gamma.
• (CS137 /CO60)?
• Previene
• EIVH. Complicación infrecuente y fatal de la
  transfusión.
• Fallo multi orgánico causado por los lnfocitos T
  CD4 del Donante
• que reaccionan contra los antígenos HLA del
  receptor.
• Incapacidad del receptor para reaccionar frente
  al injerto.

• IONIZACION capaz de provocar un
• entrecruzamiento químico en el ADN
• celular sin afectar su normal
• funcionamiento, salvo la reproductiva.
• INACTIVACION DE LOS LT,
• con daño mínimo al resto de las células
• 25-30 Gy. dosis óptima.
• Duración del HC 28 días a partir de la
  
  
  
  irradiación

23
Etiquetas de control de irradiación
24
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD

• Leucorreducción
• Previene -RFNH postransfusional,
• -Alo inmunización HLA y
  refractariedad plaquetaria,
• -Transmisión de agentes
  infecciosos
• ( CMV, HTLV I-II) ,Bacterias,
  Enf. Creutzfeld-Jacob.
• -Inmuno modulación por
  transfusión.

• 2 HS. POST EXTRACCIÓN
• ( aprovecha capacidad fagocítica de los
  leucocitos)?
• ANTES DE LAS 5 DÍAS
• ( evitar la fragmentación)?
• A TEMPERATURA AMBIENTE
• ( mayor efectividad en los mecanismos de
  adhesión y mejora del flujo).

25
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD propuestas del
mercado

• Laboratorio RIVERO
• -Permite eliminar primeros
• 15 30 ml de sangre del donante.
• -Fraccionar PF CP
• -Filtrar en línea SAGMAN
• -Obtención de tres fracciones de SD

26
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD DISPOSITIVO DE
CONEXION ESTERIL PARA UNIR DOS BOLSAS DE SANGRE
27

FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD propuestas del
mercado

• 
  BPF4NEO L / Pall Corporation

28
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SDCámara de Flujo
Laminar

• PREFILTRO
• INTRACTOR - debe producir un mínimo de flujo de
  300m3/h.
• FILTRO HEPA (High Efficiency Particulates Air) -
  99.95 de eficiencia en filtrado de partículas de
  mas de 0.3micras.
• FLUJO DE AIRE - movimiento en láminas paralelas
  impulsado a una Velocidad y Volumen constante de
  entre 0,25m/s 0,50m/s, evitando que las
  partículas en el aire cambien su sentido de
  dirección y se formen
• turbulencias. PRESION POSITIVA.

29
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD Cámara de Flujo
Laminar

• CFL Vertical

• CFL Horizontal

30
Cámara de Flujo Laminar Materiales necesarios
para procedimiento

• Sobre túnica.
• Gorro y tapabocas.
• Guantes estériles.
• Alcohol 70ª.
• Compresas Estériles.
• Tijera y pinza estériles.
• Volumen SD Irradiado.
• Equipo LR y set bolsas pediátricas.

31
(No Transcript)
32
(No Transcript)
33
FRACCIONES PEDIÁTRICAS de SD procedimiento en
C.F.L.

• 1- Cerrar las aberturas de la habitación.
• 2- Quitarse anillos y reloj y lavado de manos con
  solución antiséptica.
• 3- Sobretúnica, tapa bocas, gorro y guantes
  esteriles ( M.B.P.).
• 4- Limpieza de la mesada y paredes de C.F.L con
  compresas embebidas en alcohol 70º.
• 5- Encendido de la Cámara y Luz UVA , retirarse
  de la hab. por 15 minutos.
• 6- Cambio de guantes esteriles.
• 7- Colocacion del campo esteril dentro de la
  cámara.
• 8- Arrojar encima del campo los contenidos de los
  envases de material, sin contacto
• del envase con el campo.
• 9- Limpiar con compresa esteril y alcohol 70º la
  bolsa del HC
• 10- Todo el procedimiento dentro de la cámara
  debe hacerse con movimientos lentos.
• 11- Comenzar conecciones ,dejar armados los nudos
  de las tubuladuras de cada fracción.
• 12- Procurar colgar la bolsa de SD a máxima
  altura, dentro de la cámara.
• 13- Distribuir por igual el HC en las 4 bolsas
  utilizando grapas o pinza.
• 14- Cerrar nudos antes de sacar las fracciones de
  la cámara.

34
INFECCIONES ASOCIADAS A CATÉTERES
VASCULARESManejo de las vías venosas por el
T.H.
35
INFECCIONES ASOCIADAS A CATÉTERES VASCULARES

• COMPLICACIONES

• Bacteriemias
• Tromboflebitis séptica
• Endocarditis
• Osteomielitis
• Artritis

La bacteriemia se asocia con un incremento de la
morbimortalidad que oscila entre un 10 y
20. Las tasas de bacteriemia asociada a
catéteres centrales es mayor que la de catéteres
periféricos.
36
INFECCIONES ASOCIADAS A CATÉTERES VASCULARES

• GÉRMENES IMPLICADOS
• NNIS/ reporte 1992-1999
• PATOGENESIS

37.3 - Estafilococo CN 13.5 - Enterococo
ssp. 12.6- Estafilococo aureus
65 - PIEL 30 - SITIO DE CONECCIÓN 5 -
OTRAS VÍAS.
37
PATOGÉNESIS

• 1- MIGRAR DESDE LA PIEL. Migración de
  microorganismos al sitio de inserción del catéter
  y
  
  
  
  
  la posterior colonización de
  la punta del mismo.
• 
  Dispersión del germen desde otro sitio
  infectado.
• 2- INGRESAR POR LUZ INTERNA DEL CATÉTER.
• a - Colonización del conector del
  catéter
• Cambio de conectores y
  tubuladuras c/ 72 hs. usadas con sangre c / 24
  hs.
• Limpieza del conector con
  alcohol 70º o clorhexidina previo uso. .
  Hemoterapia?
• b Contaminación de los líquidos de
  infusión.
• Manipulación extrínseca de
  soluciones de drogas, con máxima condiciones de
  asepsia.
• Medición de PVC - No
  pinchar envases - Candidas albicans , Gram
  negativos Hemoterap
  ia?

38
PATOGÉNESIS

• 3- CARACTERÍSTICA DEL MICROORGANISMO
• A pesar del desarrollo de los materiales
  plásticos de los catéteres (PVC, teflón,
  Silicona, Poliuretano) , no se pudo evitar la
  adherencia de microorganismos.
• Estafilococos coag. neg, y Pseudomonas
  aeruginosa- Slime
• 4 - MANOS DEL PERSONAL
• Una de las principales vías de
  transmisión de infecciones hospitalarias-
  Colonización por levaduras y SCN (patógeno
  hospitalario)

39
Manejo responsable de HemoterapiaLavado de
manos y alcohol gel antes y después de
c/procedimiento

• Manejo del paciente aislado
• Uso de Port -A- Cath
• Manejo de catéteres VVC
• Plasmaféresis
• Preparación de HC y HD

• Uso de máxima barrera de protección.
• Conectores protegidos con curación de gasa .
• Limpieza del conector con alcohol o clorhexidina.
• No apoyar puntero de tubuladura, mantenerlo
  dentro del envase. Utilizar papel estéril de
  segundo envase de gasa para aislar.
• Asepsia de piel antes de la colocación de aguja
  Huber en portal.
• Cubrir con apósito transparente-lavado posterior
  con SSF y solución de heparina antes de cerrar.
• Usar siempre guantes. Cambiarlos si cambiamos de
  paciente.
• Limpieza del conector con antisépticos.
• No exponer terminales de tubuladura a contacto
  con otros objetos.
• Asegurar condiciones asépticas para preparación
  de hemoderivados.
• Manejo de catéter con campo estéril.
• Limpieza de conectores con antisépticos.
• Manejo cuidadoso del Kit de aféresis,
  especialmente el acceso y retorno.
• Asegurar condiciones asépticas para preparación
  de dilución de albúmina al 20 en SF.
• Pool de CP ,soluciones de Albúmina, pasaje a
  transfer de CP e Ig G.

40
Agradecimientos

• Lic. Beatriz Giardino. Comité de infecciones
  AMECOM
• Dr. Heber Scanda. Medicina Intensiva
• Dr. Antonio Galeana. Bacteriología.
• Dr. Alfredo Rojas. Medicina Transfusional
• A todos los compañeros que aportaron material
  para este trabajo.

41
Ser responsables en nuestras prácticas, nos hace
mas profesionales.
Muchas gracias